一、帶狀皰疹動物模型構建實驗動物選擇
1. 常用動物及特點
動物模型 | 優點 | 缺點 | 適用研究 |
豚鼠（Guinea Pig） | 對VZV敏感，可潛伏感染 | 癥狀較輕，不易自發再激活 | 潛伏感染模型 |
恒河猴（Rhesus Macaque） | 接近人類VZV感染 | 成本高、倫理限制 | 疫苗/抗病du藥評估 |
人源化小鼠（huNSG） | 可感染人VZV | 免疫系統不完整 | 病毒-宿主互作研究 |
大鼠（Rat） | 可誘導神經痛 | 不自然感染VZV | 帶狀皰疹后神經痛（PHN）模型 |
2. 選擇依據
研究潛伏感染 → 豚鼠 或 恒河猴
研究神經痛 → 大鼠（非感染模型）
研究免疫逃逸 → 人源化小鼠
二、帶狀皰疹動物模型構建病毒株準備
1. 常用VZV毒株
臨床分離株（如Oka株、Ellen株）
實驗室適應株（如VZV-32、pOka）
重組熒光報告病毒（如VZV-ORF66-GFP）
2. 病毒擴增與滴定
細胞培養：
使用 人胚胎成纖維細胞（HEF） 或 MeWo細胞 擴增VZV。
37℃培養，觀察CPE（合胞體形成）。
病毒純化：超聲破碎感染細胞釋放病毒。
病毒滴度測定：
噬斑試驗（PFU/mL）
qPCR檢測病毒DNA拷貝數
三、感染途徑與劑量
1. 感染方式
途徑 | 方法 | 適用模型 | 特點 |
皮下接種 | 足墊或背部注射 | 豚鼠、恒河猴 | 模擬原發感染 |
鼻腔接種 | 滴鼻感染 | 人源化小鼠 | 呼吸道感染 |
神經節直接注射 | 脊柱旁或三叉神經節注射 | 大鼠（非VZV模型） | 模擬神經痛 |
2. 感染劑量
豚鼠：10?–10? PFU（皮下）
恒河猴：10? PFU（靜脈/氣管）
人源化小鼠：103–10? PFU（鼻腔）
四、模型評估指標
1. 病毒感染與復制
病毒載量檢測（qPCR檢測VZV DNA）
背根神經節（DRG）、肺、脾組織
病毒抗原檢測（免疫組化/免疫熒光）
2. 潛伏感染與再激活
潛伏期檢測：
原位雜交檢測VZV潛伏相關轉錄本（如ORF63）
再激活誘導：
免疫抑制（如環lin酰胺）
紫外線照射（模擬應激）
3. 神jing病理學與疼痛行為
組織病理：
DRG炎癥、神經元損傷（HE染色）
疼痛評估（大鼠PHN模型）：
機械痛覺過敏（Von Frey纖維）
熱痛覺過敏（Hargreaves試驗）
4. 免疫應答
體液免疫：ELISA檢測VZV IgG
細胞免疫：
IFN-γ ELISPOT（VZV特異性T細胞）
流式檢測CD4?/CD8? T細胞
五、注意事項
1. 生物安全
VZV需在 BSL-2 實驗室操作，恒河猴實驗需 BSL-3（若用高劑量）。
2. 動物福利
設置 人道終點（如體重下降>20%、嚴重神經癥狀）。
疼痛模型需倫理審批（如大鼠PHN實驗）。
3. 對照設置
陰性對照：未感染/PBS組
陽性對照：已知致病株（如Oka株）
六、常見問題與優化
1. 豚鼠模型潛伏但不自發再激活
解決方案：
免疫抑制（如潑ni松龍）
神經損傷（坐骨神經結扎）
2. 人源化小鼠感染效率低
優化方案：
提高感染劑量（10? PFU）
使用 人CD34+造血干細胞重建小鼠
3. 大鼠PHN模型不涉及VZV
替代方案：
HSV-1感染模型（部分模擬VZV神經痛）
脊神經結扎（SNL）（純機械痛模型）
